大鼠脑缺血再灌注模型
造模方法
大鼠麻zui仰卧固定于恒温手术台上。暴露颈总动脉颈（CCA），分离颈内动脉（ICA）和颈外动脉（ECA）。CCA近心端结扎并另备线，ICA远端放置微型动脉夹，在CCA靠近分叉处插入鱼线，即线栓由颈内动脉分叉处计长度为1.85±0.05cm，说明丝线头端己到达ICA分支MCA以和大脑前动脉（ACA）的分叉处，阻断了同侧ICA和经ACA来自对侧ICA的血供，缺血1h。大鼠的胰管与胆管汇集于一个总管，在其入肠处插管固定，并在近肝门处结扎和另行插管，可分别收集到胰液和胆汁。
手术造模图片
病理判定图片
动物实验的管理
在建设中要充分的、尽可能的直接体现管理规范，充分考虑人为原因或可能的人为失误、尽量避免人为出现可能因素的存在；在管理上要尽可能避免设施的不足或缺陷和可能出现的漏洞，使设施可能的规范管理或充分发挥设施潜在的可进行的规范管理。
一般是指为了医学上的目的用动物进行的实验。此时，动物将作为人体的代替者或模型来使用，而对构造上、机能上所表现的种间异同问题，应从比较生物学方面去了解。一般的条件要求是接近于人、容易管理和能够大量使用的，因此多用哺乳类的兔、大黑鼠、小白鼠、豚鼠、猫、狗、猴、田鼠等；能改善jia亢模型大鼠甲状腺组织病理变化,其中高剂量组甲状腺组织结构基本同正常组。
实验动物各种体液、的采集方法
消化液的采集
(一) 唾液
1. 直接抽取法 在急性实验中， 可用吸管直接插入动物口腔或唾液腺导管抽吸唾液，此法非常简单，但从口腔抽吸唾液会有杂质混入。
2. 制造腮腺瘘法 在慢性实验中,收集狗的唾液，要用手术方法将腮腺导管开口移向体外，即以腮腺导管为中心，切成一直径约2～3cm的圆形粘膜片，将此粘膜片，与周围组织分开，穿过皮肤切口引到颊外,将带有导管开口的粘膜片与周围的皮肤缝合,腮腺分泌的唾液就流出颊外。这种方法可以收集到较纯净的唾液。实验动物本身在实验处理前、后两个阶段的各项相关数据就分别是对照组和实验组的实验结果，此法可排除生物间的个体差异。
(二)胃液
1. 直接收集胃液法 急性实验时，先将动物，将插胃管经口插入胃内,在灌胃管的出口连一，用此可收集到胃液,此法适用于狗等大型动物。如是大鼠,需手术剖腹，从幽门端向胃内插入一塑料管，再由口腔经食道将一塑料管插入前胃，用pH7.5、35℃左右的生理盐水，以12ml/h的流速灌胃，收集流出液，进行分析。将动物固定，显露尾部，将尾尘剪去约5mm，从尾根部向尾端部，血即从断端流出。
2. 制备胃瘘法 在慢性实验中,收集胃液多用胃瘘法,如全胃瘘法、巴氏小胃瘘法、海氏小胃瘘法等。制备小胃是将动物的胃分离出一小部分，缝合起来形成小胃，主胃与小胃互不相通，主胃进行正常消化，从小胃可收集到纯净的胃液。应用该法，可以待动物恢复健康后，在动物清醒状态下反复采集胃液。但事实上，对dan碱缺乏的敏感性取决于体内dan碱氧化酶的含量。
(三)胰液和胆汁
在动物实验中，主要是通过对胰总管和胆总管的插管而获得胰液或胆汁。狗的胰总管开口于十二指肠降部，在紧靠肠壁处切开胰管，结扎固定并与导管相连，即可见无色的胰液流入导管。大鼠的胰管与胆管汇集于一个总管，在其入肠处插管固定，并在近肝门处结扎和另行插管，可分别收集到胰液和胆汁。对于猴、狗、猫等动物有时可不做标记，只记录它们的外表特征和毛色即可。
有时也可通过制备胰瘘和胆囊瘘来获得胰液和胆汁。
血管钙化大鼠模型
方法:将16只雄性SD大鼠随机分为正常组和钙化组,每组8只,4周后取材检测血管钙化程度,用钙离子测试盒、碱性磷酸酶(ALP)试剂盒测定大鼠主动脉钙含量和ALP活性,用放she免yi法检测大鼠血浆和主动脉组织salusin-a含量结果与对照组比较,钙化组大鼠主动脉中膜弹性纤维间可见钙盐沉积,血浆和主动脉组织中ALP、钙含量明显升高(P < 0.01),salusin-a的表达明显降低(P <0.01).结论血管钙化大鼠模型salusin-a的表达下调.
